原生动物实验报告.docx

《原生动物实验报告.docx》由会员分享，可在线阅读，更多相关《原生动物实验报告.docx（14页珍藏版）》请在优知文库上搜索。

1、动物试验（小鼠）的一般攒作技术一H的和要求：通过实际操作，使学生驾驭试验的一般操作方法，包括动物的抓去和固定、编号被毛的去除给药途径麻醉采血和处死等方法。二试验内容：1 .试验动物的抓取2 .试验动物性别、发情和配种的鉴定3 .试验动物编号的标记方法1试验动物被毛的去除术5试验动物的给药途径和方法6试验动物的麻醉7试验动物的采血8试验动物的处死方法9雄性不育小鼠的制番三试验的方法1 .小鼠的抓取：抓取时先用手将鼠尾提起，放在试验台上，轻轻粒尾，用左手拇指和食指抓住小鼠两耳和头颈部皮肤，将鼠置于左手中心，用左手无名指和小指按住尾巴和后肢，即可做其他试验操作作用。2 .试验动物性别、发情和配种的鉴

2、定：1抓取小鼠后，视察动物肛门与生殖器之间的距离。距离远的为雄性，距离性别鉴定：O近的为雄性。成熟的雄性小就可看到小尻举丸的轮廓，雌性肛门与生殖器之间有无毛3 .动物仰卧保定，视察乳头。雄性乳头不能明显，雌性乳头明显.小沟。O发情鉴定（阴道分泌物检查）材料：生理盐水，蒸饱水，出微镜，载玻片，细棉签，性成熟小鼠原理：哺乳类雌性动物性成熟后出现情动周期，啮齿类动物在动情周期不同阶段，阴道膜发生典型的改变。操作：.用左手拇指和食指固定小鼠的颈部，将小鼠倒放在手掌上，用左手小指固定小鼠尾巴，然后用相宜大小的移液器吸取20至30u1.生理盐水于小鼠阴道内反豆抽吸5次。4 .将抽吸得到的液体滴在用多聚赖氨

3、酸预先处理过（防止脱片）的我玻片上，用移液器吸头将其匀称涂抹开。3.涂片自然干像后，用甲醇固定3分钟。4.待其干燥后，先用瑞氏染液染色5至8分钟，冲洗后马上吉姆萨染液染色5至8分钟，用水漂洗后自然干燥，待检。5.显微镜下视察阴道涂片的改变，见下图，附：小鼠发情周期阴道细胞的改变小白鼠性周期45天，发情持续时间大约9-12小时或20小时，排如是在发情起先后23小时。配种鉴定：O1.阴道栓法02涂片检查法。5 .小鼠编号的标记方法：用被毛染色法做小鼠编号。用苦味酸（黄色），一般左前肢为】，左侧腹部为2,左后肢为3,头颈部为4,背部为5,尾根部为6,右前肢为7,右腹部为8,右后肢为9。用两种颜色可以

4、染到99。6 .小鼠被毛去除：给药途径和方法：有剪毛法，拔毛法，剃毛法，用硫化钠脱毛法。5给药途径有经口灌胃法，经呼吸道吸入，经皮肤吸入和注射给药法。用一支特制的灌胃针进行潴胃，小鼠一般给1.5m1.以下。用注射器抽好液体，然后抓取小鼠，针头延侧角通过食管进入胃内，然后将液体注入“6小鼠的麻醉：麻药布挥发性的和非挥发性两种.给药途径布吸入性麻醉,注射给药。小鼠一般用腹部麻醉的方法。用戊巴比妥钠4（hngkg,依据小鼠的体重给药。抓取小鼠后，使针头和腹部成30度的角，刺入腹腔，回抽若无回血或者肠内容物可以注入。注入麻药5分钟后，小鼠失去知觉。7小鼠的采血的方法：有静脉采血法，尾部采血法，眼脏静脉

5、采血法和心脏采血法。将小鼠装入固定盒中，露出尾部，用二甲苯图擦，使尾静脉充盈。用锐利的刀片切断一根尾静脉即可用毛细管采血，也可用细注射器从尾静脉采血。8小鼠的处死方法：用颈椎脱臼的方法或者注射过量的麻药使小鼠死亡。9雄性不育小鼠的制备结扎雄尻的手术技术，包括麻醉、手术、缝合和术后视察等。1、雄鼠的麻醉：戊巴比妥钠，以40mkg腹腔注射。2、雄鼠输精管的结扎1）适合的雄鼠应在6周以上。术前和术后都应留意保持温度，尤其是术后腹部道II散热严峻。2）称重麻醉3）腹部消毒：用70%的酒精消毒腹部手术部位。4）其毛假如鼠毛多，可沿腹中线剪毛。5）切开皮肤：用钝镣子夹起皮肤，使之离开腹壁。沿膜中线在适当位

6、置开口。留意，要保持西子向上抬起。6）切开体壁：用小镶子夹住体壁，提起，使之离开肠管。再用眼科剪子在腹中线轻轻剪1厘米长的切口留意不要触伤卜面的肠管。7）找到睾丸的的白色脂肪垫.把一侧睾丸从阴囊推入腹腔。用小镣子夹住腹壁切口缘，找到附于里丸的白色脂肪垫（体）8）取出睾丸，用钝镶了夹住脂肪体，将其轻轻拉山切口，继之睾丸、输精管等也被拉出。不能干脆触与或操作睾丸，只能通过操作脂肪体使睾丸移动和定位。9）结扎输精管：细致分辨睾丸和附睾，将附睾尾下方的输精管用小摄子夹起，用健合线在夹起的输精管段的两端结扎，然后在两个结扎部的中间区域剪断。（也可用灼热的小镶子烧断输将管，或者去掉一段输精管）10）身位：

7、结扎完后，轻轻牵动脂肪体，使睾丸等更回腹腔。按上述方法结扎另一恻输精管。H）缝合：外科手术合刀口，撒上适量抗生素。术后护理：手术后的雄就要细致护理.提高环境温度。一般术后两周后才能运用篇二：动物试验与报告编写要求附模板动物试验报告要求第部分：动物试验概述应供应一个动物试验的主要内容提要，该提要应包括动物试验题目、探讨小组成员、试蛛动物和探讨产品的名称、试验用器械或药物的适应症、试时间、试验H的、试验方法、试验探讨动物、诊断与进入探讨的主要标准、试验的产品信息、剂量、给药方式与批号、治疗持续时间、参考的治疗、剂量、给药方式与批号、评价标准（有效性、平安性）、统计方法、试验结论（效能结论、平安性结

8、论、结论）与报告日期。该提要应包括表明结果的数字资料，而不仪仪是文字和P值。其次部分：试验内容（一）动物试验一般资料（动物类别选择试验用动物的入选标准和数送、试验用产品等）：（二）动物试验试验方法：（三）所采纳的统计方法与评价方法：（四）动物试验评价标准：（五）动物试脸试验结果；（六）动物试躲试捡中发觉的副作用与其处理状况；（七）动物试5金试验效果分析；（八）动物试验试验验结论：第三部分：试验（一）试验名称：要能够明确表达试验内容：（二）试验目的：要直截了当的说明为什么要进行这个试验，解决什么问题，具有什么意义：（）试验器材：全部仪器、材料应介绍齐全：所用材料、试剂、诱导物对动物有无危害影响说

9、明。（四）试验动物的选取（动物种类，性别，体垂，年龄，品系，级别，健康状况，动物来源与其合格证号）；（五）分析可能影响到动物试验结果精确性的因素以保证试验结果的精确性、牢靠性和重复性（环境因素：理化因素：养分因素：居住因素；同种动物间因素；异种动物间因素）：（六）动物试蛛设计与分组（是否符合比照性、一样性、有第性三原则：该试聆选取了什么设计方法，比如单组比较设计、配对比较设计等等；动物的机分组方法应详细描述，如分为两组或者三组或者每个动物一组时详细的操作方法，切忌不行简洁的“随机”二字就带过）。第三，试验基本技术的描述，包括：（一）试验动物的抓取与固定（哺乳类与非哺乳类动物的方法不同）：（二）

10、动物的编号、标记（临时性、半永久性与永久性标记）与去毛（剪毛法、拔毛法、剃毛法、脱毛法：（三）若该试验中动物须要麻醉，则采纳了何种麻醉类型与方法（全身麻醉方法、局部麻醉方法）以与麻醉药物与麻醉剂用成（挥发性麻醉剂、非挥发性麻辞剂），若过量麻醉，匆苏和抢救措施是如何实施的；（四）动物的给药途径与方法：依据不同的试验H的、动物种类、药物类型来确定动物的给药途径与方法：（五）动物血液的采集方法（不同部位）：（六）动物各种体液的采集方法（不同部位）：（七）常见视察指标的测定与检查方法（生理指标测定方法；生化指标测定方法：血液学指标测定与检套方法：免疫学指标测定方法）：（八）受试动物的动物试验检查方法（

11、一般检查内容与方法；系统检查与方法：动物脏器组织的活检方法）.第四，试脸过程的描述，又分为药物探讨的动物试验、免疫探讨的动物试脸、TT关感染探讨的动物试验、TT美生殖与胚胎探讨的动物试验这几方面。主要从详细试验要求，试验打算，视察指标以与结果分析与评价来说明。比如在药物长期毒性视察的动物试验方法中，须要对试验要求、视察指标和指标检测时间与复原期视察三方面考虑，乂如动物免疫血清的制番方法中，应对试验打算、免疫程序与效价测定和免疫血清的采集和提纯阐述，再如病毒增殖的动物接种试验里，应当对病毒增殖的鸡胚接种方法和动物感染病毒的接种方法作一描述。第五，试验结束后，对试验动物的处理：（一）若试验动物在试

12、验过程中未受到大的损害，则应对其实行福利措施善后处理，这里就需对处理方法做描述：若产生的损害使动物与其苦痛，出于人道考虑，应对其实行安乐死，因此安乐死的方法应说明；（二）若需剖检，应记录剖检的物品打算，尸体的外部检查状况，脏器采出与检查方法，病理材料的采集和送检方法以与尸体剖检记录。第六，对动物试验数据的处理和分析结果。第七，通过该试验，作者还TT什么须要值得改进，思索的地方都应说明。附件：植入式心脏起搏器产品动物试验动物试验的基本要求：动物试验的设计应尽量接近该器械在人体中的预期用途。一般认为犬模型适于用来评价起搏器。建议植入足够数量的动物/起搏器，以便于得出有效的结论。建议与起搏器协作运用

13、的电极需选用已经过注册批准的电极导线，如对新起搏器无法获得批准过的电极导线，则试验时应考虑未经批准的电极导线对试.验结果的影响。二、动物试验的内容1 .探讨目标感知评价起搏器对心脏信号（r、p、I波和远场信号）与噪声的感知响应评价长期感知的稔定性对感知的p、r波与电生理分析仪的值进行比较验证在起搏、遥测过程中感知的精确性对制造商标称的起搏器功能指标进行评估，并对各功能指标进行动物试验的必要性说明。例如模式转换、频率适应房室期间（raav）,起搏、睡眠特性、非竞争性心房起搏、频率等起搏功能动物试验结束后，对起搏器的输出与起搏阈值精确性进行检查假如制造商标称起搏器具Tf夺获管理功能，应通过诊断趋势

14、评估夺获管理的运行，与手动测龈比较和核查异样中断的缘山（4）电极导线阻抗测量脍证电极导线阻抗测量特性在活体环境中能依据设计运行（例如极性确认、极性配置等）程控的牢靠性验证起搏器与程控仪编程通讯的牢靠性，模拟实际运用的各种参数组合、参数训整抗干扰试验验证通讯工具、家用电气、安检系统的扰（7）植入物检测在活体环境卜.手动验证植入物性能特征感型限制植入过程应依据临床运用要求在无菌环境卜.实施。时可疑的植入部位的感染应通过对潜在病原体的培育和鉴定以进行评价植入位置验证对植入起搏器的位置的确认可采纳X射线成像术证明2 .动物选择与试物过程1)试验基本条件：具备外科无菌手术条件，建议采纳试验用犬。模型制备

15、：隹议采纳射频消融术、化学消融或外科手术等技术建立犬iii房室传导阻滞(iii0avb)动物模型，建议每个型号的植入性起搏器试验动物应在9只或以上。以体表心电图和腔内心电图显示房室分别即视作达到手术终点。两组动物在手术后应用体表心电图和/或h。Iter随访视察4周。模型稳定性的评价:在手术4周后随访体表心电图仍稳定地表现为iii房室传导阻滞(iiiavb),显示p、ors波分别。起搏器植入方法与时间：依据人体临床运用的永久性起搏器植入方法进行植入，至少植入8周。当对已上市的设备增加的新功能进行动物试验时，制造商可依据新增产品功能的详细实际状况酌情选择试验动物数量，但是其得到的试膝结果应能支持其设备新功能的临床平安有效性。3 .试验需纪录的电生理指标：检测起搏器植入即刻与访1、2、3、4周时以0.5脉宽刺激时的阈值。起搏参数与监护参数：包括起搏器的电性能指标和起搏模式。动物的生理指标监测与试验后起搏器外观和植入部位的状况分析。三、动物试验分析评价与结论制造商需对取得的动物试验数据进行最终的风险分析与评价，并得出探讨结论。在试验时应对试验动物运用生理参数监护仪，监测动物的生理指标。试验结束后，取出起搏